مجله علوم پزشکی پارس

مطالعه برخی پارامترهای کبدی متعاقب پرتوگیری با رادیوداروهای گالیم 67 و ید 131 در موش صحرایی نر

نویسندگان

1 استادیار، گروه زیست شناسی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران

2 کارشناس ارشد بیوفیزیک،گروه زیست شناسی،دانشگاه پیام نور، تهران، ایران

چکیده

مقدمه: کبد اندام حساس و در معرض خطر در رادیوتراپی تومورهای ناحیه سینه و شکم است. در مطالعه حاضر، تغییرات در آزمون های عملکردی کبد در طی پرتودرمانی با رادیو داروهای گالیم 67 و ید 131 مورد بررسی قرار گرفت.
روش کار: حیوانات مورد آزمایش 60 سر موش صحرایی بودند که به سه گروه تقسیم شدند: گروه کنترل هیچ تیماری دریافت نکردند، گروه تجربی اول و دوم به ترتیب، 0.1 میلی کوری ید 131 از طریق گاواژ دهانی و 0.3 میلی کوری گالیم 67 از طریق تزریق درون صفاقی دریافت کردند. 48 ساعت پس از تزریق یا گاواژ دهانی، نمونه های خونی تهیه و برای اندازه گیری آنزیم های آلانین آمینو ترانسفراز، آسپارتات آمینو ترانسفراز و میزان سرمی آلبومین بررسی شدند.
یافته ها: میزان آنزیم های آسپارتات آمینو ترانسفراز در گروه دریافت کننده ید و آلانین آمینو ترانسفراز و میزان سرمی آلبومین در گروه دریافت کننده ید 131 و گالیم 67 افزایش معناداری نسبت به گروه کنترل نشان داد.
نتیجه گیری: با توجه به حساسیت کبد در طی پرتودرمانی و افزایش میزان سرمی آنزیم های این اندام، می توان از آزمون های عملکردی کبد به عنوان بیومارکرهای مفید برای تشخیص اثرات پرتودرمانی استفاده کرد.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Study some of hepatic parameters following exposure to 67gallium and 131 iodine in male rat

نویسندگان [English]

  • Fereshteh Dadfar 1
  • Kourosh Bamdad 1
  • Somayeh Jafari 2

1 Assistant Professor, Departement of Biology, Payame Noor University, Tehran, Iran

2 MSc of Biophysics, Departement of Biology, Payame Noor University, Tehran, Iran

چکیده [English]

Introduction: The liver is an organ at risk in radiotherapy of thoracic and abdominal tumors. In this study was investigated the alteration in liver functional tests during radiotherapy with gallium 67 and iodine 131.
Materials & Methods: Sixty male Wistar rats were divided into 3 groups: the control without treatment, the experimental
groups 1 and 2 received 0.1Mci 131 iodine through oral gavage 0.3Mci 67Gallium with intraperitoneal injection respectively. 48 hours after injection or oral gavage, the level of serum aspartate aminotransferase, alanine aminotransferase and albumin were checked.
Results: The results showed that level of serum aspartate aminotransferase in 131 iodine group and alanine aminotransferase and albumin significant increase in 131 iodine and 67Gallium than control group.
Conclusion: Regarding liver sensitivity during radiation therapy and elevated serum levels of these enzymes, liver
function tests may be useful as biomarkers for the detection of radiotherapy effects.

کلیدواژه‌ها [English]

  • 131Iodine
  • 67Gallium
  • Hepatic Enzymes
  • Hepatic Proteins
[1] Emami B. Tolerance of normal tissue to therapeutic radiation. Reports of radiotherapy and oncology. 2013;1: 37-48. [2] Cullings HM.. Impact on the Japanese Atomic Bomb Survivors of Radiation Received From the Bombs.Health Phys.2014;106: 281–293. [3] Dorr W..Radiobiology of tissue reactions. Ann. ICRP. 2015;44: 58–68. [4] Tai A, Erickson B, Allen X. Extrapolation of normal tissue complication probability for different fractionations in liver irradiation. Int J Radiation Oncology Biol Phys.2008;74: 283-289. [5] Richard M, Gore M, Marc Levine S. High – yield imaging , gastrointestinal. 1th ed. Philadelphia: saunders; 2010 [6] Tanaka H, Hayashi S, Ohtakara K, Hoshi H. Hepatic dysfunction after radiotherapy for primary gastric lymphoma. Journal of Radiation Research. 2012;52: 92–97. [7] Raju SB, Battu RG, Manju latha YB, Srinivas K. Anti hepatotoxic activity of smilax china roots on CCl4 induced hepatic damage in rats. Int J Pharm Pharm sci.2012;4: 494-496. [8] Afrasiabie M, Mokhtari M. Effect of Dianthus carryophyllu extract on the induced hepatotoxicity by Gentamicin in Wistar Rats. J Gorgan Uni Med Sci. 2016;18: 22-29.(persian) [9] Makhlouf R, Makhlouf I. Evaluation of the effect of Spirulina against Gamma irradiation induced oxidative stress and tissue injury in rats. Int. J. Appl. Sci. Eng. Res.2012;1:152-164. [10] El-Deeb AE, Abd E-Aleem IM, Abd El-Rahman A. The curative effect of some antioxidants on γ-irradiated rats, J. Egypt. Soc. Toxicol.2006;35:79-89. [11] Jung J, Yoon SM, Kim SY, Cho B, Park JH, Kim SS. Radiation-induced liver disease after stereotactic body radiotherapy for small hepatocellular carcinoma: clinical and dose-volumetric parameters. Radiation Oncology. 2013;8: 249-253. [12] Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics.CA: a cancer journal for clinicians. 2012;62:10-29. [13] Hoffer PB. Status of gallium-67 in tumor detection. JNucI Med. 1998;21: 394-398. [14] Liu W, Haley BM, Kwasny MJ, Li JJ, Grdina DG, Paunesku T, Woloschak G. The Effects of Radiation and Dose-Fractionation on Cancer and Non-Tumor Disease Development. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2012;9: 4688–4703. [15] Abd El-Azime AS, Hussein EM, Ashry OM. Synergestic effect of aqueous purslane (Portulaca oleracea L.) extract and fish oil on radiation-induced damage in rats. Int. J. Radiat. Biol. 2014;90 :1184–1190. [16]Sun Q, Mao W, Jiang H, Zhang X, Xiao J, Lian Y.The Effect of Protracted Exposure to Radiation on Liver Injury: A Cohort Study of Industrial Radiographers in Xinjiang, China. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2018;15:1-11. [17] Zahedi R, Bakhshandeh M, Sabouri H, Yar Ahmadi M, Nami A, Roshani D. Early effect of radiation on the liver function tests of patients with thoracic and abdominal tumors during radiotherapy. Journal of Paramedical Sciences. 2016;7:8-12.(persian) [18] Amouoghli Tabriz B, Naeimi Kararoudi M, Mahmoudian B. Evaluation of Serumal Levels of AST, ALT, Total Bilirubin, Glucose, Urea and Creatinin in Mice after Administration of Tc-99m MIBI. International Journal of Animal and Veterinary Advances. 2012;4: 68-70.(persian) [19] Bamdad K, Ahmadi B. The effect of radiopharmaceutical 99Tc, iodine 131 and gallium 67 on plasma levels of alkaline phosphatase enzyme in adult male rat. Thesis 2017. [20] Senturk H, Canbakan B, Hatemi I. A clinical approach to high levels of liver enzymes. Cerrahpasa Medicine Faculty. 2004;38: 9-13. [21] Walsh L, Grosche B, Schnelzer M, Tschense A, Sogl M, Kreuzer M. A review of the results from the German Wismut uranium miners cohort. Radiat. Prot. Dosim.2015; 164:147–153. [22] Ozasa K, Shimizu Y, Suyama A, Kasagi F, Soda M, Grant EJ, Sakata R, Sugiyama H, Kodama K.Studies of the mortality of atomic bomb survivors: An overview of cancer and noncancer diseases. Radiat. Res.2012;177: 229–243. [23] Pan CC, Kavanagh BD, Dawson LA, Li XA, Das SK, Miften M, Ten Haken RK. Radiation-associated liver injury. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys.2010;76: S94–S100. [24] Lim SC, Choi JE, Kang HS, Si H.Ursodeoxycholic acid switches oxaliplatin-induced necrosis to apoptosis by inhibiting reactive oxygen species production and activating p53-caspase 8 pathway in HepG2 hepatocellular carcinoma. International Journal of Cance.2010;126:1582–1595. [25]Onody A, Csonka C, Giricz Z, Ferdinandy P. Hyperlipidemia induced by a cholesterol-rich diet leads to enhanced peroxynitrite formation in rat hearts. Cardiovasc. Res. 2003;58: 663–670. [26] Finkel T, Holbrook NJ. Oxidants, oxidative stress and biology of aging. Nature. 2000;408:239-247. [27]. Abdelhalim M, Moussa A. The biochemical changes in rats' blood serum levels exposed to different gamma radiation doses.African Journal of Pharmacy and Pharmacology.2013;7: 785-792. [28]. Kannampalli P, Sang H, Kyong CH. Hesperidin a flavanoglycone protects against γ-irradiation induced hepatocellular damage and oxidative stress in Sprague–Dawley rats. European Journal of Pharmacology. 2008;287: 273-280. [29] Li G, Wang J, Hu W, Zhang ZH. Radiation-Induced Liver Injury in ThreeDimensional Conformal Radiation Therapy (3D-CRT) for Postoperative or Locoregional Recurrent Gastric Cancer: Risk Factors and Dose Limitations. Plos one. 2015;1-10. [30] Hawkins D, Abrahamse H. How Should an Increase in Alkaline Phosphatase Activity Be Interpreted?Laser Chemistry. 2007;4: 1-10.
مجله علوم پزشکی پارس
دوره 17، شماره 2 - شماره پیاپی 48
تیر 1398
صفحه 40-45